Сустентоциты, или клетки сертоли крыс в динамике адаптации к низким температурам по данным
DOI:
https://doi.org/10.28983/asj.v0i8.545Ключевые слова:
клетки Сертоли, крысы, адаптация, низкие температуры, ультраструктурный анализ, трансмиссионная электронная микроскопияАннотация
Представлены результаты ультраструктурного анализа сустентоцитов крыс на этапах адаптации организма животных к низким температурам. Методом трансмиссионной электронной микроскопии было установлено, что в популяции сустентоцитов появляются клетки с ультраструктурными признаками функционального напряжения, направленными на поддержание секреторной функции. В сустентоцитах наблюдаются гиперплазия и дилатация элементов гладкой эндоплазматической сети, которые появляются после 1-й недели и достигают манифестации к 4-й неделе адаптации. После 4 недель адаптации в некоторых сустентоцитах наблюдаются ультраструктурные признаки истощения в виде вакуолизации цитоплазмы, просветления клеточного матрикса, накопления миелиноподобных структур, уменьшения количества митохондрий. Обнаруженные ультраструктурные изменения функциональной активности сустентоцитов могут быть причиной нарушений сперматогенеза, сопровождающихся потерей герминативных клеток.
Скачивания
Библиографические ссылки
2. Судаков К.В. Эволюция концепции стресса // Вестник Российской АМН, 2008. – № 11. – С.59-65.
3. Cheng C.Y. Molecular mechanisms of spermatogenesis // Springer science + Bisness Media, LLC Landes Bioscience. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2008. Austin, Texas, USA. Vol. 638. 271p.
4. Creasy D.M., Chapin R.E. Testicular and epididymal toxicity: Pathogenesis and potential mechanisms of toxicity //Spermatogenesis, 2014. – Vol.4, № 2. – IDA [article ID]: e1005511. – To link to this article: https://doi.org/10.1080/21565562.2014.1005511
5. Hazra R., Corcoran L., Robson M. et al. Temporal Role of Sertoli Cell Androgen Receptor Expression in Spermatogenic Development // Molecular Endocrinology, 2013. – Vol.27, № 1. – P. 12-24.
6. Johnson K.J. Testicular histopathology associated with disruption of the Sertoli cell cytoskeleton //Spermatogenesis, 2014. – Vol.4, № 2. – IDA [article ID]: e979106. – To link to this article: https://doi.org/10.4161/21565562.2014.979106
7. Kolasa A., Marchlewicz M., Kurzava R. The expression of inducible nitric oxide synthase (iNOS) in the testis and epididymis of rats with a dihydrotestosterone (DHT) deficiency// Cellular & Molecular Biology Letters, 2009. – Vol.14. – P. 511-527.
8. Lee N.P., Cheng C.Y. Nitric oxide and cyclic nucleotides: their roles in junction dynamics and spermatogenesis // Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2008. – Vol. 1, № 1. – P. 25-32.
9. Murphy C.J., Richburg J.H. Implications of Sertoli cell induced germ cell apoptosis to testicular pathology// Spermatogenesis, 2014. – Vol.4, № 2. – IDA [article ID]: e979110. To link to this article: https://doi.org/10.4161/21565562.2014.979110
10. Odum J. Creasy D., Cartwright J. et al. Guidance document for histologic evaluation of endocrine and reproductive tests in rodents // ENV/JM/MONO. – 2009. – Vol. 11, № 106.
11. Vidal J.D., Whitney K.M. Morphologic manifestations of testicular and epididymal toxicity Spermatogenesis, 2014. – Vol.4, № 2. – IDA [article ID]: e979099. To link to this article: https://doi.org/10.4161/21565562.2014.979099
12. Walker W.H. Testosterone signaling and the regulation of spermatogenesis // Spermatogenesis, 2011. – Vol.1, № 2. – P. 116-120.
