МЕТОДЫ ПОЛУЧЕНИЯ ТРАНСГЕННЫХ ЭМБРИОНОВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА (обзор литературы)

  • Екатерина Валерьевна Корниенко ФГБНУ Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий
  • Анастасия Борисовна Романова Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий
  • Галина Петровна Маленко Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий
Ключевые слова: трансгеноз, крупный рогатый скот, эмбрион, ооцит

Аннотация

В статье представлена обзорная информация о методах получения трансгенных эмбрионов крупного рогатого скота. На основании имеющихся данных можно сделать вывод, что все приведенные методы имеют ряд существенных ограничений, которые оказывают отрицательное воздействие на их эффективность. В результате этого вопрос разработки оптимального метода трансгеноза ооцитов и эмбрионов крупного рогатого скота остается открытым.

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Екатерина Валерьевна Корниенко, ФГБНУ Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий

научный сотрудник

Анастасия Борисовна Романова, Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий

младший научный сотрудник

Галина Петровна Маленко, Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий

 д-р биол. наук

Литература

1. Bachiller D., Schellander K., Peli J., Ruthe U. Liposome-Mediated DNA Uptake by Sperm // Cells. Mol. Reprod. Dev.,1991, V. 30, P.194–200.
2. Bang J.I., Jin J.I., Ghanem N., Choi B.H., Fakruzzaman M., Ha A.N., Lee K.L., Uhm S.J., Ko D.H., Koo B.C. , Lee J.G., KongI. K. Quality improvement of transgenic cloned bovine embryos using an aggregation method: Effects on cell number, cell ratio, embryo perimeter, mitochondrial distribution, and gene expression profile // Theriogenology, 2015, V. 84, P. 509–523.
3. Bevacqua R.J., Pereyra-Bonnet F., Olivera R., Hiriart M.I., Sipowicz P., Fernandez-Martín R., Radrizzani M., Salamone D.F. Production of IVF transgeneexpressing bovine embryos using a novel strategy based on cell cycle inhibitors // Theriogenology, 2012, V. 78, P. 57–68.
4. Bi Y., Liu X., Zhang L., Shao C., Ma Z., Hua Z., et al. Pseudo attP sites in favor of transgene integration and expression in cultured porcine cells identified by streptomyces phage phiC31 integrase // BMC Mol Biol., 2013, V.14, P. 20.
5. Bordingnon V., Keyston R., Lazaris A., Bilodeau AS., Pontes J.H.F., Arnold D., Fecteau G., Keefer C., Smith L.C. Transgene expression of green fluorescent protein and germ line transmission in cloned calves derived from in vitro-transfected somatic cells // Biol Reprod, 2003, V.68, P. 2013–2023.
6. Fleming A., Abdalla E.A., Maltecca C., Baes C.F. Invited review: Reproductive and genomic technologies to optimize breeding strategies for genetic progress in dairy cattle // Arch. Anim. Breed.,2018, V. 61, P. 43–57.
7. Keefer C. L. Artificial cloning of domestic animals // P. Natl. Acad.Sci. USA, 2015, V.112, P. 8874–8878.
8. Monzani P.S., Guemra S., Adona P.R., Ohashi O.M. Working with Lentivirus for Generation of Transgenic Bovine Embryos. Pharm Anal Acta 5, 2014, P. 169.
9. Monzani P.S., Adona P.R., Ohashi O.M., Meirelles F.V., Wheeler M.B. Transgenic bovine as bioreactors: Challenges and perspectives // BIOENGINEERED, 2016, V. 7, No. 3, P. 123–131.
10. Niemann H., Kind A., Schienieke A. Productionofbio-pharmaceuticals in transgenic animals. // Kayser O,Warzecha H (eds), Pharmaceutical Biotechnology– Drug discovery and Clinical Applications, 2nd edn.Wiley-Blackwell, Weinheim, Germany, 2012, 71–111 pp.
11. Sekhavati M.H., Hosseini S.M., Tahmoorespur M., Ghaedi K., Jafarpour F., Hajian M., Dormiani K., Nasr-Esfahani M.H. PhiC31-based site-specific transgenesis system for production of transgenic bovine embryos by somatic cell nuclear transfer and intracytoplasmic sperm injection // Cell J., 2018, V. 20, No.1, P. 98–107.
12. Shemesh M., Gurevich M., Harel-Markowitz E., Benvenisti L., Shore L.S., Stram Y. Gene Integration Into Bovine Sperm Genome and Its Expression in Transgenic Offspring // Mol. Reprod. Dev., 2000, V. 56, P. 306–308.
13. Smith K. R. Sperm-Mediated Gene Transfer: Concepts and Controversies. – Bentham Science Publishers. 2012.
14. Spadafora C. Sperm-mediated ‘reverse’ gene transfer: a role of reverse transcriptase in the generation of new genetic information // Human Reproduction, 2008,P. 735–740.
15. Suzuki R., Takizawa T., Negishi Y., Utoguchi N., Maruyama K. Effective gene delivery with novel liposomal bubbles and ultrasonic destruction technology // International Journal of Pharmaceutics, 2008, V. 354, P. 49–55.
16. Vajta G., Peura T.T., Holm P., Páldi A., Greve T., Trounson A.O., Callesen H. New method for culture of zona-included or zona-free embryos: the Well of the Well (WOW) system // Mol. Reprod. Dev., 2000, V. 55, P. 256–264.
17. Vichera G., Moro L., Salamone D. Efficient Transgene Expression in IVF and Parthenogenetic Bovine Embryos by Intracytoplasmic Injection of DNA–Liposome Complexes // Reprod. Dom. Anim., 2011, V. 46, No. 2, P. 214–220.
18. Vichera G., Moro L.N., Buemo C., Salamone D. DNA fragmentation, transgene expression and embryo development after intracytoplasmic injection of DNA–liposome complexes in IVF bovine zygotes // Zygote , 2012, V. 22, No.02, P. 195–203.
19. Vichera G., Olivera R., Salamone D. Oocyte genome cloning used in biparental bovine embryo reconstruction // Zygote, 2013, V. 21, No.01, P. 21–29.
20. Wall R.J. Pronuclear microinjection. // Cloning Stem Cells, 2001, V. 3, P. 209–220.
21. Wang Y.S., Tang S., An Z.X., Li W.Z., Liu J., Quan F.S., et al. Effect of mSOF and G1.1/G2.2 media on the developmental competence of SCNTderived bovine embryos // Reprod Domest Anim, 2011, V. 46, P. 404–409.
Опубликован
2018-11-08
Выпуск
Раздел
Естественные науки