РАСПРОСТРАНЕНИЕ ТЕЙЛЕРИОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В МОСКОВСКОЙ ОБЛАСТИ

  • Сергей Алексеевич Бурсаков Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий
  • Светлана Николаевна Ковальчук Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий
Ключевые слова: клещевые инфекции, Theileria spp., крупный рогатый скот, Babesia spp., Bos Taurus

Аннотация

Трансмиссивные заболевания крупного рогатого скота, вызываемые возбудителями Theileria и Babesia, высокоопасны для животных и приводят к значительным экономическим потерям в животноводстве. В данной работе был использован молекулярно-генетический метод идентификации этих возбудителей в крови животных одного из хозяйств Московской области. Возбудителя бабезиоза выявлено не было, в то время как количество зараженных Theileria spp. животных колебалось в значительных пределах от 19 до 43 %, в зависимости от сезонности. Идентичность от 97 до 100 % показана для нуклеотидных последовательностей фрагмента гена 18S рРНК обнаруженных изолятов с пятью разными видам Theileria spp. Полученные данные об уровне зараженности крупного рогатого скота Theileria spp. позволяют привлечь внимание к проблеме, способной играть значительную роль в

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Сергей Алексеевич Бурсаков, Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий

канд. биол. наук

Светлана Николаевна Ковальчук, Центр экспериментальной эмбриологии и репродуктивных биотехнологий

канд. биол. наук

Литература

1. Колабский Н. А., Тейлериозы животных. – 2 изд. – Л.: Колос, 1978. – 198 c.
2. Скорнякова О.О. Эпизоотологический мониторинг и динамика сезонной восприимчивости крупного рогатого скота к бабезиозу и анаплазмозу // Российский паразитологический журнал. – 2014. – № 4. – С. 34–39.
3. Шевцов А.А. Ветеринарная паразитология. – 2-е изд., перераб. и доп. – М.: Колос, 1970. – 463 с.
4. Criado-Fornelio A., Buling A., Asenzo G., Benitez D., Florin-Christensen M., Gonzalez-Oliva A., Henriques G., Silva M., Alongi A., Agnone A., Torina A., Madruga, C.R. // Veterinary Parasitology, 2009, Vol. 162, P. 200–206.
5. de Waal D.T. Equine piroplasmosis: a review. Br. Vet. J. 1992, 148, P. 6–14.
6. Eickbush T.H., Eickbush D.G. Finely orchestrated movements: evolution of the ribosomal RNA genes // Genetics, 2007, Vol. 175, P. 477–485.
7. Gardner M.J., Bishop R., Shah T., de Villiers E.P., Carlton J.M., Hall N. Genome sequence of Theileria parva, a bovine pathogen that transforms lymphocytes // Science, 2005, Vol. 309, P. 134–137.
8. Gebrekidan H., Hailu A., Kassahun A., Rohoušová I., Maia C., Talmi-Frank D., Warburg A., Baneth G. Theileria infection in domestic ruminants in northern Ethiopia // Veterinary Parasitology, 2014, Vol. 200, P. 31–38.
9. Gubbels J.M., de Vos A.P., van der Weide M., Viseras J., Schouls L.M., de Vries E. Simultaneous detection of bovine Theileria and Babesia species by reverse line blot hybridization // Journal of Clininical Microbiology, 1999, Vol. 37, P. 1782–1789.
10. Hailemariam Z., Krücken J., Baumann M., Ahmed J.S., Clausen P.H., Nijhof A.M.. Molecular detection of tick-borne pathogens in cattle from Southwestern Ethiopia // PLoS One. 2017, 12(11):e0188248.
11. Hayashida K., Hara Y., Abe T., Yamasaki C., Toyoda A., Kosuge T., Y., Sato Y., Kawashima S., Katayama T., Wakaguri H., Inoue N., Homma H., Tada-Umezak M., Yagi Y., Fujii Y., Takuya Habara, Minoru Kanehisa, Watanabe H., Ito K., Gojobori T., Sugawara H., Imanishi T., Weir W., Gardner M., Pain A., Shiels B., Hattori M., Nene V., Sugimoto C. Comparative genome analysis of three eukaryotic parasites with differing abilities to transform leukocytes reveals key mediators of Theileria-induced leukocyte transformation // mBio. 2012, Vol. 3, No. 5, e204–e212.
12. Hillis D.M., Dixon M.T. Ribosomal DNA: molecular evolution and phylogenetic inference // The Quarterly Review of Biology, 1991, Vol. 66, P. 411–453.
13. Kocan K.M., de la Fuente J., Blouin E.F., Coetzee J.F., Ewing S.A. The natural history of Anaplasma marginale // Veterinary Parasitology, 2010, Vol. 167, P. 95–107.
14. Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., and Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms // Molecular Biology and Evolution, 2018, Vol. 35, P. 1547–1549.
15. Lagrée A.C., Rouxel C., Kevin M., Dugat T., Girault G., Durand B., Pfeffer M., Silaghi C., Nieder M., Boulouis H.J., Haddad N. Co-circulation of different A. phagocytophilum variants within cattle herds and possible reservoir role for cattle // Parasitology and Vectors, 2018, Vol. 11, P. 163.
16. Liu Q., Zhou Y.Q., He G.S., Oosthuizen M.C., Zhou D.N., Zhao J.L. Molecular phylogenetic studies on Theileria spp. isolates (China) based on small subunit ribosomal RNA gene sequences // Tropical Animal Health and Production, 2010, Vol. 42, P. 109–114.
17. Mans B.J., Pienaar R., Potgieter F.T., Latif A.A. Theileria parva, T. sp. (buffalo) and T. sp. (bougasvlei) 18S variants // Veterinary Parasitology 2011, Vol. 182, P. 382–383.
18. Mans B.J., Pienaar R., Latif A.A. A review of Theileria diagnostics and epidemiology // International Journal Parasitology: Parasites and Wildlife, 2015, Vol. 4, No. 1, P. 104–18.
19. Suarez C.E., Laughery J.M., Schneider D.A., Sondgeroth K.S., McElwain T.F. Acute and persistent infection by a transfected Mo7 strain of Babesia bovis // Molecular and Biochemical Parasitology, 2012, Vol. 185, P. 52–57.
20. Tamura K. and Nei M.Estimation of the number of nucleotide substitutions in the control region of mitochondrial DNA in humans and chimpanzees // Molecular Biology and Evolution, 1993, Vol. 10, P. 512–526.
Опубликован
2018-12-10
Выпуск
Раздел
Естественные науки