Видовой состав болезней сорговых культур в лесостепи Среднего Поволжья

Авторы

  • Марина Николаевна Кинчарова Поволжский научно-исследовательский институт селекции и семеноводства – филиал Самарского научного центра РАН
  • Евгений Владимирович Матвиенко Поволжский научно-исследовательский институт селекции и семеноводства – филиал Самарского научного центра РАН

DOI:

https://doi.org/10.28983/asj.y2020i12pp18-21

Ключевые слова:

сорго, суданская трава, патоген, видовой состав болезней, грибы, бактериальная инфекция, фитоэкспертиза, семенной материал, сортообразец, пятнистость, лесостепь Среднего Поволжья

Аннотация

В работе приведены результаты полевых и лабораторных исследований видового состава болезней сорго и суданской травы. Установлено, что пятнистость листьев сорговых культур в лесостепи Среднего Поволжья вызвана более обширным комплексом патогенов, чем было принято считать ранее, в то время как симптомы поражения разными видами грибов могут быть схожи внешне. Наиболее важным является проведение фитоэкспертизы семян и дальнейшее выявление источников накопления инфекции в семенном материале в полевых условиях, во время уборочных работ и в ходе последующей подработки семенного материала на семяочистительных линиях и т.д. Для этого листья с различными проявлениями пятнистостей отбирали и исследовали в лаборатории микроскопическим методом с предварительным выдерживанием материала во влажной камере. На листьях сорго зернового, собранных в период вегетации 2018 г. и засушенных в виде гербарного материала, были отмечены в основном пятна темно-фиолетового, почти черного цвета различного размера и конфигурации. При идентификации возбудителей на листьях обнаружены и определены преимущественно грибы: Alternaria tenuissima, Botrytis cenerea, Trichothecium roseum. В 2019 г. листья с пятнистостями отбирали уже на разных сортообразцах сорго и суданской травы, и идентификацию проводили с привязкой к различным проявлениям симптомов во время вегетации растений. На пораженных листьях в зоне пятен были обнаружены мицелий и спороношения грибов родов Cladosporium herbarum (82,1 % всех исследованных образцов), Alternaria sp. (71,1 %) и Verticillium sp. (71,4 %). Средняя частота встречаемости выявлена для Trichothecium roseum (53,6 %), Helminthosporium sp. (42,9 %), Cercospora sorghi (39,3 %) и Fusarium sp. (35,7 %). Кроме того, на 32,1 % образцов была зафиксирована и бактериальная инфекция.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Биографии авторов

Марина Николаевна Кинчарова, Поволжский научно-исследовательский институт селекции и семеноводства – филиал Самарского научного центра РАН

канд. с-х наук

Евгений Владимирович Матвиенко, Поволжский научно-исследовательский институт селекции и семеноводства – филиал Самарского научного центра РАН

канд. биол. наук

Библиографические ссылки

Ягодин Б.А., Жуков Ю.П., Кобзаренко В.И. Агрохимия. – М.: Колос, 2002. – 585 с.

Dimkpa C.O., Fugice J., Singh U., Lewis T.D. Development of fertilizers for enhanced nitrogen use efficiency – Trends and perspectives // Science of the Total Environment, 2020,Vol. 731, P. 113–139.

Din M., Nelofer R., Salman M., Abdullah, Khan F.H., Khan A., Ahmad M., Jalil F., Din J.U., Khan M. Production of nitrogen fixing Azotobacter (SR-4) and phosphorus solubilizing Aspergillus niger and their evaluation on Lagenaria siceraria and Abelmoschus esculentus // Biotechnol. Reports. Elsevier B.V., 2019 , Vol. 22, Р. 323–329.

Oldroyd G., Dixon R. Biotechnological solutions to the nitrogen problem / Oldroyd G., Dixon R. // Current Opinion in Biotechnology, 2014, Vol. 26, P. 19–24.

Tu C., Wei J., Guan F., Liu Y., Sun Y., Luo Y. Biochar and bacteria inoculated biochar enhanced Cd and Cu immobilization and enzymatic activity in a polluted soil // Environ. Int. Elsevier Ltd, 2020, Vol. 137, P. 105576.

Lehmann J., Rillig M.C., Thies J., Masiello C.A., Hockaday W.C., Crowley D. Biochar effects on soil biota - A review //Soil Biology and Biochemistry, 2011, Р. 1812–1836.

Kumar A., Dorodnikov M., Splettst??er T., Kuzyakov Y., Pausch J. Effects of maize roots on aggregate stability and enzyme activities in soil // Geoderma. Elsevier B.V., 2017, Vol. 306, P. 50–57.

Clara L., Fatma R., Viridiana A., Liesl W. Soil organic carbon the hidden potential [Electronic resource] // Food and agriculture organization of the united nations, 2017, P. 90. – URL: http://www.fao.org/3/a-i6937e.pdf (accessed: 11.08.2020).

Gaby J.C., Buckley D.H. A Comprehensive Evaluation of PCR Primers to Amplify the nifH Gene of Nitrogenase // PLoS One / ed. Balcazar J.L. Public Library of Science, 2012, Vol. 7, No. 7, P. 142–149.

Poly F., Ranjard L., Nazaret S., Gourbi?re F., Jocteur Monrozier L. Comparison of nifH Gene Pools in Soils and Soil Microenvironments with Contrasting Properties // Appl. Environ. Microbiol. American Society for Microbiology (ASM), 2001, Vol. 67, No. 5, P. 2255–2262.

Загрузки

Опубликован

2020-12-16

Выпуск

Раздел

Агрономия