ДНК-маркеры бесшипности у представителей семейства Rosaceae
DOI:
https://doi.org/10.28983/asj.y2024i4pp63-68Ключевые слова:
розоцветные, ежевика, роза, селекция, гены, трихомы, бесшипностьАннотация
Многочисленные представители семейства Rosaceae являются экономически выгодными культурами. Однако существует ряд факторов, которые затрудняют уход за растениями, что определенно мешает их одомашниванию и промышленному производству. Одной из проблем является наличие трихом. В связи с этим выращивание растений с отсутствием шипов является весьма актуальной задачей. Изучение молекулярно-генетических основ селекции розоцветных является необходимым условием для разработки новых подходов к созданию бесшипных сортов. Известно множество генов, которые могут быть использованы в селекции семейства Rosaceae. Одним из таких является ген TTG1, регулирующий инициацию трихом путем образования комплексов с факторами транскрипции. Анализ литературных данных, приведенных в данной статье, показал, что гены TTG, кодирующие белок, могут быть использованы в селекции бесшипных сортов розоцветных. Целью данной работы являлся обзор проблем и последних достижений в области молекулярной генетики и селекции бесшипности семейства Rosaceae.
Скачивания
Библиографические ссылки
Витковский В. Л. Малина и ежевика. Плодовые растения мира. СПб.; М.; Краснодар, 2003. С. 355–382.
Грюнер Л.А. Особенности самоплодности ежевики // Научно-технический Бюллетень ВИР. 1985. Вып. 155. С. 63–64.
Евдокименко С. Н., Кулагина В. Л. Оценка сортов ежевики и малино-ежевичных гибридов в условиях Брянской области // Садоводство и виноградство. 2015. № 4. С. 20–23. https://doi.org/10.31676/0235-2591-2015-4-20-23.
Ягодные культуры в Центральном регионе России / И. B. Казаков [и др.]. М.: ФГБНУ ВСТИСП. 2016. 232 с.
A network of redundant bHLH proteins functions in all TTG1-dependentpathways of Arabidopsis / F. Zhang., A. Gonzalez, M. Z. Zhao, C. T. Payne, A. Lloyd // Development. 2003. Vol. 130. P. 4859–4869.
A high-quality genome sequence of Rosa chinensis to elucidate ornamental traits // L. Hibrand Saint-Oyant, T. Ruttink, L. Hamama, I. Kirov, D. Lakhwani, N. N. Zhou // Nat. Plants. 2018. No. 4. P. 473–484. DOI: 10.1038/s41477-018-0166-1.
Decaploidy in Rosa praelucen Byhouwer (Rosaceae) endemic to Zhongdian plateau, Yunnan, China / H. Y. Jian, H. Zhang, K. X. Tang, S. F. Li, Q. G. Wang // Caryology. 2010. No. 63. P. 162–167.
Gruner L., Kornilov B. The diversity of blackberry habitus and its significance for cultivars’ growing in the conditions of central Russia // International Scientific and Practical Conference “Fundamental and Applied Research in Biology and Agriculture: Current Issues, Achievements and Innovations” (FARBA 2021). 2021. Vol. 254. P. 8.
Guterman I. Rose Scent: Genomics Approach to Discovering Novel Floral Fragrance-Related Genes // Unknown journal title. 2002. No.14. P. 2325–2338.
Genetic determinism of prickles in rose / N. N. Zhou, K. X. Tang, J. Jeauffre, T. Thouroude, D. C. L. Arias, F. Foucher, L. H. Oyant // Theor Appl Genet. 2020. No. Vol. 133. No. 11. P. 3017–3035. DOI: 10.1007/s00122-020-03652-7. Epub 2020 Jul 30. PMID: 32734323.
Khadgi A., Weber C. Genome-Wide Association Study (GWAS) for Examining the Genomics Controlling Prickle Production in Red Raspberry (Rubus idaeus L.) // J. Agronomy. 2021. No. 11(1). P. 27. https://doi.org/10.3390/agronomy11010027
L?pez J., Marulanda M., L?pez A. Comportamiento agron?mico y adaptabilidad de materiales ?lite de Rubus glaucus Benth sin aguijones en dos municipios del departamento del Risaralda, Colombia // J. Revista Unisarc. 2009. Vol.7. 14–29 p.
Molecular genetics and genomics of the Rosoideae: state of the art and future perspectives / S. Longhi, L. Giongo, M. Buti, N. Surbanovski, R. Viola, R. Velasco, J. A. Ward, D. J. Sargent // Hortic Res. 2014. No. 1. P. 1.
Morphological studies of developing Rubus prickles suggest that they are modified glandular trichomes / A. A. Kellogg, T. J. Branaman, N. M. Jones, C. Z. Little, J. D. Swanson // Botany. 2011. No. 89. P. 217–226.
Ourecky D. K. Advances in Fruit Breeding. West Lafayette, Indiana, Purdue University Press; 1975. P. 98–129.
Pattanaik S., Patra B., Singh S. An overview of the gene regulatory network controlling trichome development in the model plant, Arabidopsis // Frontiers in Plant Science. 2014. No. 5. (e141). DOI: 10.3389/fpls.2014.00259.
Payne C. T., Zhang F., Lloyd A. M. J. G. GL3 encodes a bHLH protein that regulates trichome development in Arabidopsis through interaction with GL1 and TTG1// Genetics. 2000. Vol.156. P. 1349–1362. DOI: 10.1093/genetics/156.3.1349.
RrTTG1 promotes fruit prickle development through an MBW complex in Rosa roxburghii / X. Huang, P. Yi, Y. Liu, Q. Li, Y. Jiang, Y. Yi, H.Yan // Front Plant Sci. 2022. Aug 29;13:939270. DOI: 10.3389/fpls.2022.939270. PMID: 36105707; PMCID: PMC9465040.
The TRANSPARENT TESTA GLABRA1 locus, which regulates trichome differentiation and anthocyanin biosynthesis in arabidopsis, encodes a WD40 repeat protein / A. R.Walker, P. A. Davison, A. C. Bolognesi-Winfield, C. M. James, N. Srinivasan, T. L. Blundell, J. J. Esch, M. D. Marks, J. C. Gray // Plant Cell. 1999. No. 11. P. 1337–1349. https://doi.org/10.1105/tpc.11.7.1337.
Wang Yu., Mingyuan Zhao, Zongda Xu., Lanyong Zhao, Xu Han. College of Forestry, Shandong Agricultural University, Tai’an, China. Cloning and Expression Analysis of TTG1 Gene Related to Rosa rugosa Trichomes Formation. 2019. DOI: 10.4236/ajps. 102020.
Загрузки
Опубликован
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2024 Аграрный научный журнал
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
