Новые элементы оценки морфогенеза регенерантов хмеля in vitro
DOI:
https://doi.org/10.28983/asj.y2024i5pp40-46Ключевые слова:
Humulus lupulus L., морфогенез, рост, развитие, in vitro, клональное микроразмножениеАннотация
Для культуры растений in vitro используют различные показатели и методы оценки микрорастений: отслеживают динамику развития и формирования новых органов, используют шкалы для визуальной оценки, бонитировочные шкалы, балльную оценку. На основании данных, полученных при оценке ростовых характеристик пяти генотипов хмеля обыкновенного (Humulus lupulus L.), показано соответствие скорости образования междоузлий S-образной, или сигмоидной, кривой. На основе анализа формирования морфологических структур, предложена шкала оценки ростовых параметров хмеля в культуре in vitro. Отмечена значительная вариабельность морфометрических показателей в зависимости от группы спелости сорта. Так, скороспелый сорт Цивильский формировал стандартные размеры регенерантов – 6–7 междоузлий на 10 суток раньше, чем позднеспелый сорт Таурус. Данная шкала может быть использована для оценки влияния различных факторов на рост и развитие растений-регенерантов культур, обладающих быстрым ростом в условиях in vitro (хмель, виноград, мята и др.), и разработки программ клонального микроразмножения.
Скачивания
Библиографические ссылки
Бычкова О. В., Хлебова Л. П., Барышева Н. В. Среднесрочное хранение генофонда картофеля в культуре тканей in vitro // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2022. С. 12– 7. DOI:10.53083/1996-4277-2022-216-10-12-17.
Высоцкий В. А. Совершенствование методов сохранения ценных генотипов плодовых и ягодных культур in vitro // Плодоводство и ягодоводство России. 2015. Т. 41. С. 69–73.
Гашенко О. А., Кастрицкая М. С., Кухарчик Н. В. Микроразмножение сортов хмеля в культуре in vitro // Субтропическое и декоративное садоводство. 2019. № 68. С. 111–118.
Кастрицкая М. С., Кухарчик Н. В., Гашенко О. А Микроразмножение сортов хмеля in vitro // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. аграр. Навук. 2014. № 2. С. 75–80. URL: https://vestiagr.belnauka.by/jour/article/view/75/76.
Князева И. В., Вершинина О. В., Донецких В. И. Совершенствование приемов клонального микроразмножения ягодных культур путем воздействия магнитно-импульсной индукции // Современные тенденции развития технологий здоровьесбережения: сб. тр. Седьмой науч. конф. с междунар. участием. М., 2019. С. 388–394.
Логвина А. О., Емельянова П. А., Дитченко Т. И. Характеристика роста клеток и накопления фенольных соединений в суспензионной культуре Trigonella foenum-graecum L. // Живые и биокосные системы. 2013. № 5. URL: https://jbks.ru/archive/issue-5/article-12.
Маркова Ю. А., Романенко А. С., Алексеенко А. Л. Колонизация растений картофеля in vitro условно патогенной бактерией Escherichia сoli // Доклады академии наук. 2008. Т. 420. № 2. С. 279–281.
Никонович Т. В. Влияние спектрального состав света на морфофизиологические реакции растений-регенерантов Solanum tuberosum L. в условиях культуры in vitro // Биотехнологические приемы в сохранении биоразнообразия и селекции растений: сб. ст. Междунар. науч. конф.; ГНУ «Центральный ботанический сад Национальной академии наук Беларуси», 18–20 авг. 2014. Минск, 2014. С. 183–189.
Овэс Е. В., Гаитова Н. А., Бойко В. В. Параметры оценки морфогенеза in vitro в процессе тиражирования исходного материала картофеля // Картофелеводство. 2018. Т. 26. № 1. С. 291–296.
Плаксина Т. В. Оптимизация условий для длительного сохранения садовых растений в культуре in vitro // Аграрная наука сельскому хозяйству: материалы XVI Междунар. науч. -практ. конф. Барнаул, 9–10 февраля, 2021. Барнаул, 2021. С. 286–287.
Рупошев А. Р. Зональные особенности возделывания хмеля и эфиромасличных культур // Ваш сельский консультант. 2004. № 1. С. 29–31.
Томилова С. В., Кочкин Д. В., Тюрина Т. М. Особенности роста и синтеза вторичных метаболитов в культурах in vitro Digitalis lanata Ehrh. // Физиология растений. 2022. Т. 69. № 2. С. 149–160. DOI:10.31857/S001533032202020.
Федулов Ю. П., Котляров В.В., Доценко К.А. Рост и развитие растений. Краснодар: КубГАУ, 2013. 85 с.
Dzis V., Diachynska O. Construction of mathematical plant growth model // The scientific heritage. 2020. No. 56. Р. 48–54.
Kovalev V. B., Kozli T. I., Protsenko L.V. Extending and maintaining the in vitro collection of (inter)national hop varieties in Ukraine // Agricultural science and practice. 2020. Vol. 7. No. 3. – P. 61–70. URL: https://www.agrisp.com/pdf/2020_03_07.pdf.
Maksimov I., Apaseev А., Maksimov V. Towards a mathematical model of plant growth // International AgroScience Conference (AgroScience-2021) IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science. 2021. P. 1–9. DOI: 10.1088/1755-1315/935/1/012031.
Mirleau-Thebaud V., Scheiner J. D., Dayde J. Growth kinetics at early stages of sunflower (Helianthus annuus L.) under soil compaction // Conference: XIIIth International Sunflower Conference Mar Del Plata. Аrgentina, 2012. P. 1–6. DOI: 10.13140/RG.2.2.32186.80323.
Schumann T., Paul S., Melzer M. Plant growth under natural light conditions provides highly flexible short-term acclimation properties toward high light stress // Plant Sciense. 2017. Vol. 8. P. 1–18. DOI:10.3389/fpls.2017.00681.
Загрузки
Опубликован
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2024 Аграрный научный журнал
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
