Микробиом карпа при включении в рацион ванилина и ультрадисперсных частиц
DOI:
https://doi.org/10.28983/asj.y2025i11pp88-95Ключевые слова:
карп, Cyprinus carpio, аквакультура, микробиом, кормление, ванилин, ультрадисперсные частицыАннотация
Микробиота кишечника имеет жизненно важную роль в регуляции метаболизма в организме животных. Качественное и количественное изменение сообществ в микробиоте может привести к серьезным последствиям. В статье представлены сведения о микробиоме карпа (Cyprinus carpio), в рацион которого дополнительно включали кормовые препараты. Добавки наносили на основной рацион (ОР) путем напыления: I группа – ОР + ванилин (250 мг/кг корма), II группа – ОР + ультрадисперсные частицы диоксида кремния (УДЧ SiO2) – 200 мг/кг корма, III группа – ОР + ванилин + УДЧ SiO2 в аналогичных дозировках. Установлено, что кормовые препараты оказали различное действие на микробиом карпа. На уровне фил во всех группах доминировал Pseudomonadota, что характерно для пресноводных видов рыб. В то же время отмечено повышение численности фил Fusobacteriota в I группе и Bacteroidota во II группе. На уровне родов во II и III группах отмечали большое разнообразие представителей, при этом в I группе заметно снижение количества родов. Так, в I группе отмечали повышение Vibrio (Р?0,01), Aeromonas (Р?0,01) и Cetobacterium (Р?0,01) по сравнению с контролем. Во II группе установлено увеличение численности представителей Aeromonas (Р?0,01), при снижении Aurantimicrobium (Р?0,05) и Polynucleobacter (Р?0,05). Для III группы было характерно широкое разнообразие кишечной микробиоты на уровне родов. Доминирующим родом стал Schlegelella (Р?0,05), но при этом снизилась численность Aurantimicrobium (Р?0,05). Кроме того, в III группе выявлены представители родов, полностью отсутствующих в контрольной группе, неквалифицированных бактерий из семейства Caulobacteraceae, Prauserella, Enhydrobacter, Parageobacillus, Lactobacillus и Luteolibacter. Таким образом, включение в рацион карпа ванилина и УДЧ SiO2 оказало влияние на качественный и количественный состав микробиома кишечника.
Скачивания
Библиографические ссылки
Аэромоноз карпа как следствие алиментарных заболеваний (этиология, патогенез, диагностика и меры борьбы) / П. С. Илюшина [и др.] // Тенденции развития науки и образования. 2022. № 86-5. С. 152–156. [Aeromonoz karpa kak sledstvie alimentarnyh zabolevanij (etiologiya, patogenez, diagnostikaI merybor'by) / P. S. Ilyushina et al. Tendencii Razvitiya Naukii Obrazovaniya. 2022;86-5:152–156]. DOI: 10.18411/trnio-06-2022-237].
Кобечинская В.Г., Стрюков А.А., Артёменко М.О.Санитарно-бактериологическая оценка промысловых морских рыб и морской среды вблизи побережья Крыма и пресноводных рыб в рыбоводных хозяйствах полуострова // Ученые записки Крымского федерального университета имени В.И. Вернадского. Биология. Химия. 2024. Т. 10. № 1. С. 113–130. [KobechinskyV. G., StryukovA. A., ArtyomenkoM. O. Sanitary and bacteriological assessment of commercial marine fish and the marine environment near the coast of Crimea and freshwater fish in farm fisheries of the peninsula. Uchenye Zapiski Krymskogo Federal'nogo Universiteta Imeni V.I. Vernadskogo. Biologiya. Himiya. 2024;10(1):113–130. (In Russ.)]. DOI: 10.29039/2413-1725-2024-10-1-113-130.
Микробиом рубца молодняка крупного рогатого скота, получавшего пищевые добавки с медью и травой полыни: состав и функциональный профиль/ Е.В. Шейда [и др.] // Аграрный научный журнал. 2024. № 1. С. 96–105. [Microbiome of the rumen of young cattle receiving dietary supplements with copper and wormwood grass: composition and functional profile/E.V. Sheidaet al. Agrarian Scientifi c Journal. 2024;(1):96–105. (In Russ.)]. DOI: 10.28983/asj.y2024i1pp96-105.
Современные исследования по изучению микробиома кишечника рыб (обзор) / М.С. Зуева [и др.] // Животноводство и кормопроизводство. 2023. Т. 106. № 2. С. 198–213. [Modern research on the study of the intestinal microbiome in fish (review) / M.S. Zueva et al. Animal Husbandry and Fodder Production. 2023;106(2):198–213. (In Russ.)]. DOI: 10.33284/2658-3135-106-2-198.
Acute copper oxide nanoparticles exposure alters zebrafish larval microbiome / S. Balasubramanian, M.A. Haneen, G. Sharma, E. Ekambaram. Life Sciences. 2024;336:122313. DOI: 10.1016/j.lfs.2023.122313.
Akter S., Shin K. Pseudaeromonasparamecii sp. nov., isolated from the ciliate Paramecium caudatum and emendation of the genus Pseudaeromonas. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2018;68(6):1845–1850. DOI: 10.1099/ijsem.0.002746.
Bifidobacterium and Lactobacillus improve inflammatory bowel disease in zebrafish of different ages by regulating the intestinal mucosal barrier and microbiota / Y. Ni, Y. Zhang, L. Zheng, N. Rong, Y. Yang, P. Gong, Y. Yang, X. Siwu, C. Zhang, L. Zhu, Z. Fu. Life Sciences. 2023;324:121699. DOI: 10.1016/j.lfs.2023.121699.
Camel milk microbiota: A culture-independent assessment / R. Rahmeh, A. Akbar, H. Alomirah, M. Kishk, A. Al-Ateeqi, S. Al-Milhm, B. Akbar, S. Al-Merri, M. Alotaibi, A. Esposito. Food Research International. 2022;159:111629. DOI: 10.1016/j.foodres.2022.111629.
Comparative genome analysis of the genus Hydrotalea and proposal of the novel species Hydrotalealipotrueae sp. nov., isolated from a groundwater aquifer in the south of Mallorca Island, Spain / J.F. Gago, T. Viver, M. Urdiain, S. Pastor, P. K?mpfer, P.A. Robledo, E. Ferreira, R. Rossell?-M?ra. Systematic and Applied Microbiology. 2021;44(6):126277. DOI: 10.1016/j.syapm.2021.126277.
Effects of dietary co-exposure to fungal and herbal functional feed additives on immune parameters and microbial intestinal diversity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / J. Mougin, V. Lobanov, M. Danion, R. Roquigny, L. Goardon, T. Grard, T. Morin, L. Labb?, A. Joyce. Fish & Shellfish Immunology. 2023;137:108773. DOI: 10.1016/j.fsi.2023.108773.
Effects of dietary supplementation with inactivated Lactobacillus plantarum on growth performance, haemato-biochemical parameters, liver fatty acids profile and intestinal microbiome of Nile tilapia / P.H.S. Ferro, G.C. Ribeiro, L.E. Borba, R.O. Batista, D.da Rosa Farias, D.M. Fracalossi, E. Schwegler, M.S. Owatari, D.D. Schleder. Veterinary Research Communications. 2024; 48(4):2397–2406. DOI: 10.1007/s11259-024-10425-w.
Effects of different temperatures on Leiocassislongirostris gill structure and intestinal microbial composition / Z. Zhao, H. Zhao, X. Wang, L. Zhang, C. Mou, Z. Huang, H. Ke, Y. Duan, J. Zhou, Q. Li. Scientific Reports. 2024;14(1):7150. DOI: 10.1038/s41598-024-57731-6.
Effects of enrofloxacin's exposure on the gut microbiota of Tilapia fish (Oreochromis niloticus) / J. Chen, Q. Li, C. Tan, L. Xie, X. Yang, Q. Zhang, X. Deng. Comparative biochemistry and physiology. Part D, Genomics & proteomics. 2023;46:101077. DOI: 10.1016/j.cbd.2023.101077.
Environment shapes the fecal microbiome of invasive carp species / J.J. Eichmiller, M.J. Hamilton, C. Staley, M.J. Sadowsky, P.W. Sorensen.Microbiome. 2016;(4):44. DOI: 10.1186/s40168-016-0190-1.
Exploitation of multiple host-derived nutrients by the yellow catfish epidermal environment facilitates Vibrio mimicus to sustain infection potency and susceptibility / Y. Feng, J. Wang, W. Fan, B. Huang, Z. Qin, Z. Tian, Y. Geng, X. Huang, P. Ouyang, D. Chen, W. Lai. Fish & Shellfish Immunology. 2024;151:109707. DOI: 10.1016/j.fsi.2024.109707.
Modulation of the gut microbiota by processed food and natural food: evidence from the Sinipercachuatsi / H. Li, S. Niu, H. Pan, G. Wang, J. Xie, J. Tian, K. Zhang, Y. Xia, Z. Li, E. Yu, W. Xie, W. Gong. PeerJ. 2024;12:e17520. DOI: 10.7717/peerj.17520.
Mol M., de MaayerP.Elucidating the biotechnological potential of the genera Parageobacillus and Saccharococcus through comparative genomic and pan-genome analysis. BMC Genomics. 2024;25:723. DOI: 10.1186/s12864-024-10635-1.
Nitrogen removal and water microbiota in grass carp culture following supplementation with Bacillus licheniformis BSK-4 / Q. Liang, X. Zhang, K.H. Lee, Y. Wang, K. Yu, W. Shen, L. Fu, M. Shu, W. Li. World Journal of Microbiology & Biotechnology. 2015;31(11):1711-8. DOI: 10.1007/s11274-015-1921-3.
Vitamin B12 produced by Cetobacteriumsomerae improves host resistance against pathogen infection through strengthening the interactions within gut microbiota / X. Qi, Y. Zhang, Y. Zhang, F. Luo, K. Song, G. Wang, F. Ling. Microbiome. 2023;11(1):135. DOI: 10.1186/s40168-023-01574-2.
Загрузки
Опубликован
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2025 Аграрный научный журнал
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-NoDerivatives» («Атрибуция — Некоммерческое использование — Без производных произведений») 4.0 Всемирная.
