Исследование физико-химических свойств кормовой добавки на основе наночастиц селена, диоксометилтетрагидропиримидина, орнитина, йода и флавоноидов для снижения окислительного стресса животных

Авторы

  • Ольга Сергеевна Ларионова Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии имени Н.И. Вавилова
  • Борис Иванович Древко Саратовский государственный университет генетики, биотехнологии и инженерии имени Н.И. Вавилова

DOI:

https://doi.org/10.28983/asj.y2025i12pp114-119

Ключевые слова:

селен, наночастицы, диоксометилтетрагидропиримидин, орнитин, йод

Аннотация

Разработаны и исследованы некоторые основные физико-химические и биологические свойства кормовой добавки на основе наночастиц селена, диоксометилтетрагидропиримидина, орнитина, йода и флавоноидов. При анализе методом динамического рассеяния света установлено, что размер частиц, стабилизированных поливинилпирролидоном, составлял 5–15 нм с дзета-потенциалом –16,4 мВ, что свидетельствует об оптимальном размере для прохождения клеточных мембран организма и, как следствие, высокой биодоступности, а также стабильности данного коллоидного раствора в водной среде, что предоставляет возможность использовать данную кормовую добавку не только в смешении с кормом, но и при выпаивании животных. Это позволяет более четко дозировать данную добавку и вводить ее в рацион как в крупных хозяйствах и комплексах, так и в мелких, не имеющих своей базы по производству кормов. Исследования токсичности показывают возможность использования данной кормовой добавки в дозировках превышающих максимально планируемые 10 мг/кг без негативных последствий, а исследования показателей крови после 14-суточного применения кормовой добавки хоть и не показывают изменения билирубина и щелочной фосфотазы выше нормы, но достоверно свидетельствуют об увеличении концентрации этих показателей в сравнении с контролем, что свидетельствует о повышении антиоксидантного потенциала животных без отклонения от нормы.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Библиографические ссылки

ALDH2 deficiency increases susceptibility to binge alcohol-induced gut leakiness, endotoxemia, and acute liver injury in mice through the gut-liver axis / W. Rungratanawanich, Y. Lin, X. Wang et al. Redox Biol. 2023;(59):102577. doi: 10.1016/j.redox.2022.102577. Epub 2022 Dec 13.

Alkadi H. A Review on Free Radicals and Antioxidants. Infect Disord Drug Targets. 2020;20(1):16–26. doi: 10.2174/1871526518666180628124323.

Andersson M., Braegger C. P. The Role of Iodine for Thyroid Function in Lactating Women and Infants. Endocr Rev. 2022;43(3):469–506. doi: 10.1210/endrev/bnab029.

Berberine alleviates liver fibrosis through inducing ferrous redox to activate ROS-mediated hepatic stellate cells ferroptosis / J. Yi, S. Wu, Y. Tan et al. Cell Death Discov. 2021;7(1):374. doi: 10.1038/s41420-021-00768-7.

Berberine inhibits hepatic stellate cell proliferation and prevents experimental liver fibrosis / X. Sun, X Zhang, H. Hu et al. Biol Pharm Bull. 2009;32(9):1533–7. doi: 10.1248/bpb.32.1533.

Dynamic modeling of Nrf2 pathway activation in liver cells after toxicant exposure / S. Hiemstra, M. Fehling-Kaschek, I. A. Kuijper et al. Sci Rep. 2022;12(1):7336. doi: 10.1038/s41598-022-10857-x.

Effects of berberine hydrochloride on antioxidant response and gut microflora in the Charybdis japonica infected with Aeromonas hydrophila / M. Han, Y. Guo, S. Tang. et al. BMC Mi-crobiol. 2024;24(1):287. doi: 10.1186/s12866-024-03420-3.

Effect of berberine on arachidonic acid metabolism in rabbit platelets and endothelial cells / C. G. Huang, Z. L. Chu, S. J. Wei et al. Thromb Res. 2002;106(4–5):223–7. doi: 10.1016/s0049-3848(02)00133-0.

El-Behery R. R., El-Sayed E. R., El-Sayyad G. S. Gamma rays-assisted bacterial synthesis of bimetallic silver-selenium nanoparticles: powerful antimicrobial, antibiofilm, antioxi-dant, and photocatalytic activities. BMC Microbiol. 2023;23(1):224. doi: 10.1186/s12866-023-02971-1.

Gogvadze V., Zhivotovsky B. Analysis of Mitochondrial Dysfunction During Cell Death. Methods Mol Biol. 2021;(2276):215–225. doi: 10.1007/978-1-0716-1266-8_16.

Hatch-McChesney A., Lieberman H. R. Iodine and Iodine Deficiency: A Compre-hensive Review of a Re-Emerging Issue. Nutrients. 2022;14(17):3474. doi: 10.3390/nu14173474.

Jain K., Sharma S., Utreja D. Uracil: A Pharmacophore with Diverse Biological Po-tential. Biological Chemistry & Chemical Biology. 2024;9(5). Available at: https://doi.org/10.1002/slct.202303179

L-ornithine L-aspartate for prevention and treatment of hepatic encephalopathy in people with cirrhosis / E. T. Goh, C. S. Stokes, S. S. Sidhu et al. Cochrane Database Syst Rev. 2018;5(5):CD012410. doi: 10.1002/14651858.CD012410.pub2.

Melatonin ameliorates carbon tetrachloride-induced hepatic fibrogenesis in rats via inhibition of oxidative stress / H. Wang, W. Wei, N. P. Wang et al. Life Sci. 2005;77(15):1902–15. doi: 10.1016/j.lfs.2005.04.013.

Mitochondrial dysfunction in the development and progression of neurodegenerative diseases / J. Johnson, E. Mercado-Ayon, Y. Mercado-Ayon et al. Arch Biochem Biophys. 2021;(702):108698. doi: 10.1016/j.abb.2020.108698.

Mitochondrial dysfunction and tissue injury by alcohol, high fat, nonalcoholic sub-stances and pathological conditions through post-translational protein modifications / B. J. Song, M. Akbar, M. A. Abdelmegeed et al. Redox Biol. 2014;(3):109–23. doi: 10.1016/j.redox.2014.10.004.

NADPH Oxidases Connecting Fatty Liver Disease, Insulin Resistance and Type 2 Diabetes: Current Knowledge and Therapeutic Outlook / A. Nasce, K. Gariani, F. R. Jornayvaz et al. Antioxidants (Basel). 2022;11(6):1131. doi: 10.3390/antiox11061131.

Naviaux R. K. Oxidative shielding or oxidative stress? J Pharmacol Exp Ther. 2012;342(3):608–18. doi: 10.1124/jpet.112.192120. Epub 2012 Jun 13.

Oxidative stress mitigation by antioxidants - An overview on their chemistry and in-fluences on health status / A. M. Pisoschi, A. Pop, F. Iordache et al. Eur J Med Chem. 2021;(209):112891. doi: 10.1016/j.ejmech.2020.112891.

Protective Effects of Sesamol against Liver Oxidative Stress and Inflammation in High-Fat Diet-Induced Hepatic Steatosis / W. Zheng, Z. Song, S. Li et al. Nutrients. 2021;13(12):4484. doi: 10.3390/nu13124484.

Reactive oxygen species - sources, functions, oxidative damage / K. Jakubczyk, K. Dec, J. Kaldunska et al. Pol Merkur Lekarski. 2020;48(284):124–127.

Rhizoma Coptidis and Berberine as a Natural Drug to Combat Aging and Aging-Related Diseases via Anti-Oxidation and AMPK Activation / Z. Xu, W. Feng, Q. Shen et al. Aging Dis. 2017;8(6):760–777. doi: 10.14336/AD.2016.0620.

Selenium: biochemical role as a component of glutathione peroxidase / J. T. Rotruck, A. L. Pope, H. E. Ganther et al. Science. 1973;179(4073):588-90. doi: 10.1126/science.179.4073.588.

SIRT1 Controls Acetaminophen Hepatotoxicity by Modulating Inflammation and Oxidative Stress / P. Rada, V. Pardo, M. A. Mobasher et al. Antioxid Redox Signal. 2018;28(13):1187–1208. doi: 10.1089/ars.2017.7373. Epub 2017 Dec 11.

Suliman H. B., Carraway M. S., Piantadosi C. A. Postlipopolysaccharide oxidative damage of mitochondrial DNA. Am J Respir Crit Care Med. 2003;167(4):570–9. doi: 10.1164/rccm.200206-518OC. Epub 2002 Dec 12.

Yang Y. M., Cho Y. E., Hwang S. Crosstalk between Oxidative Stress and Inflamma-tory Liver Injury in the Pathogenesis of Alcoholic Liver Disease. Int J Mol Sci. 2022;23(2):774. doi: 10.3390/ijms23020774.

Zimmermann M. B., Boelaert K. Iodine deficiency and thyroid disorders. Lancet Di-abetes Endocrinol. 2015;3(4):286–95. doi: 10.1016/S2213-8587(14)70225-6.

Загрузки

Опубликован

2025-11-28

Выпуск

Раздел

Зоотехния и ветеринария

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)