НАНОЧАСТИЦЫ СЕЛЕНА И МИЦЕЛЛЫ АНТИГЕНОВ ППД – СРЕДСТВА ПРОФИЛАКТИКИ ТУБЕРКУЛЁЗА
DOI:
https://doi.org/10.28983/asj.v0i10.413Ключевые слова:
наночастицы селена, мицеллы, иммунизация, туберкулин, Mycobacterium bovis BCGАннотация
В работе изучены адъювантные свойства мицелл неионогенного детергента Triton X-114 и липидов кишечной палочки, а также наночастиц селена при иммунизации антигенами диагностического препарата туберкулина (ППД). Для получения мицелл использовали коммерческий неионогенный детегент Triton X-114 или липиды Escherichia coli Б-5, выделенные из клеток бактерии экстракцией по Фолчу. Частицы восстановленного селена получали восстановлением селенистой кислоты тиосульфатом натрия в присутствии ППД. Мицеллы липидов E. coli Б-5 с антигенами ППД получали гидратацией сухой пленки липидов бактерии совместно ППД. Мицеллы Triton X-114 получали растворением детергента в растворе ППД.
Исследовали образование антител против ППД и клеток Mycobacterium bovis BCG при иммунизации белых мышей указанными конструкциями в сравнении с иммунизацией ППД, используя метод непрямого дот-иммуноанализа, а также иммунотурбодиметрически. Иммунизация мышей мицеллами липида E. coli Б-5 или Triton X-114, несущими ППД, приводит к образованию антител против антигенов туберкулина более высокому, нежели при иммунизации самим ППД. Иммунизация всеми препаратами, включая ППД, приводит к образованию антител, распознающих клетки M. bovis BCG, однако наиболее высокие титры антител наблюдаются в плазмах крови животных, получавших мицеллы липида E. coli Б-5 или Triton X-114. Полученные результаты свидетельствуют о возможности использования мицелл и наночастиц селена в качестве адъюванта для иммунизации антигенами микобактерий.
Скачивания
Библиографические ссылки
2. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. – М.: Медицина, 1967. – 464 с.
3. Использование наночастиц селена в качестве наноносителя лекарственных веществ и антигенов на примере адъюванта при иммунизации животных против колибактериоза / К.П. Габалов [и др.] // Ветеринарная патология. – 2016. – Т. 3. – № 57. – С. 29–37.
4. Козлов С.В. Конструирование коллоидного комплекса селена с лактоферрином и изучение его биодинамических свойств // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. – 2012. – № 1. – С. 27–32.
5. Конструирование конъюгатов коллоидного селена и коллоидного золота с белком вируса гриппа и изучение их иммуногенных свойств / П.В. Меженный [и др.] // Вестник Саратовского госагроуниверситета им. Н.И. Вавилова. – 2013. – № 2. – С. 29–32.
6. Маянский А.Н., Виксман М.К. Способ оценки функциональной активности нейтрофилов человека по реакции восстановления нитросинего тетразолия. – Казань: Изд-во Казан. мед. ун-та, 1979. – 11 с.
7. Разработка иммунозолотых диагностических систем для идентификации возбудителя туберкулеза in situ / С.А. Староверов [и др.] // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. –2011. – № 2. – С. 29–32.
8. Староверов С.А., Семёнов С.В. Адъювант для биопрепаратов // Патент РФ № 2214278. 2003.
9. Староверов С.А., Дыкман Л.А. Использование наночастиц золота для получения антител к туберкулину, иммуноанализа микобактерий и вакцинации животных // Российские нанотехнологии. – 2013. – Т. 8. – № 11–12. – С. 118–122.
10. Benvegnu T., Lemi?gre L., Cammas-Marion S. Formulation of a New Generation of Liposomes from Bacterial and Archeal Lipids // Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 2016, Vol. 15, No. 2, P. 215–220.
11. Bordier C. Phase Separation of Integral Membrane Proteins in Triton X-114 Solution // J Biol Chem., 1981, Vol. 256, No. 4, P. 1604–1607.
12. Brill K.J., Li Q., Larkin R., Canaday D.H., Kaplan D.R., Boom W.H., Silver R.F. Human Natural Killer Cells Mediate Killing of Intracellular Mycobacterium tuberculosis H37Rv via Granule-Independent Mechanisms // Infect. Immun. 2001. Vol. 69, No. 3, P. 1755–1765.
13. Chen Y-H., Chang H.P., Lin. Z.H., Wang C.R. Size effect of colloidal selenium particles on the inhibition of LPS-induced nitric oxide production // Journal of the Chinese Chemical Society, 2005, No. 52, P. 389–399.
14. Dieli F., Troye-Blomberg M., Ivanyi J., Fourni? J.J., Bonneville M., Peyrat M.A., Sireci G., Salerno A. Vgamma9/Vdelta2 T lymphocytes reduce the viability of intracellular Mycobacterium tuberculosis // Eur. J. Immunol., 2000, Vol. 30, No. 5, P. 1512–1519.
15. Dieli F., Caccamo N., Meraviglia S., Ivanyi J., Sireci G., Bonanno C.T., Ferlazzo V., Mendola C., Salerno A. Reciprocal stimulation of ?? T cells and dendritic cells during the anti-mycobacterial immune response // Eur. J. Immunol., 2004, No. 34, P. 3227–3235.
16. Dykman L.A., Bogatyrev V.A. Gold nanoparticles: preparation, functionalisation and applications in biochemistry and immunochemistry // Russian Chemical Reviews, 2007, Vol. 76, No. 2, P. 181–194.
17. Folch J., Lees M., Sloane Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues // J Biol Chem., 1957, No. 226, P. 497–509.
18. Gidden J., Denson J., Liyanage R., Ivey D.M., Lay J.O. Lipid Compositions in Escherichia coli and Bacillus subtilis During Growth as Determined by MALDI-TOF and TOF/TOF Mass Spectrometry // Int. J. Mass Spectrom, 2009, Vol. 283, P. 178–184.
19. Kleinschmidt J. H., Wiener M. C., Tamm L. K. Outer membrane protein A of E. coli folds into detergent micelles, but not in the presence of monomeric detergent // Protein Sci,1999, No. 8, P. 2065–2071.
20. Meena L.S. Survival mechanisms of pathogenic Mycobacterium tuberculosis H37Rv // FEBS Journal, 2010, No. 277, P. 2416–2427.
21.URL: http://www.uniprot.org/ (дата обращения 05.07.17).
