ВЛИЯНИЕ СНИЖЕНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ САХАРОЗЫ НА ЭМБРИОИДОГЕНЕЗ В КУЛЬТУРЕ НЕОПЫЛЕННЫХ ЗАВЯЗЕЙ КУКУРУЗЫ

Авторы

  • Татьяна Алексеевна Алаторцева Саратовский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского

Ключевые слова:

гаплоиды, кукуруза, неопыленные завязи, in vitro, сахароза, эмбриоиды

Аннотация

Для оптимизации условий получения гаплоидных растений в культуре неопыленных завязей кукурузы исследовали
эффективность снижения концентрации сахарозы в питательной среде в процессе культивирования. Донорами экс-
плантов являлись одна апомиктичная и шесть амфимиктичных линий кукурузы. Завязи переносили с исходной среды
(9,0 % сахарозы) на новую среду (2,0 % сахарозы) через 7, 14, 21, 28, 35, 45, 55 суток от момента инокуляции. У амфимик-
тичных линий завязи дегенерировали во всех вариантах эксперимента, не дав новообразований. У апомиктичной линии
гибель эксплантов наблюдалась только при непродолжительном (7 суток) выдерживании их на исходной питательной
среде. В остальных случаях завязи оставались жизнеспособными и продуцировали эмбриональные новообразования с час-
тотой от 2,3 до 6,5 %. При этом отсутствовала корреляционная связь между частотой морфогенеза и длительностью
первичного культивирования. Полученные результаты позволяют рекомендовать для индукции эмбриоидогенеза в не-
опыленных завязях кукурузы линии АТ-1 беспересадочное культивирование на среде c 9,0 % сахарозы.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Биография автора

Татьяна Алексеевна Алаторцева, Саратовский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского

канд. биол. наук, доцент кафедры генетики, Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н. Г. Чернышевского. Россия.

Библиографические ссылки

1. Алаторцева Т.А., Тырнов B.C. Гормононезависимое проявление эмбрио генеза in vitro у партеногенетическои линии кукурузы // Бюл. бот. сада СГУ. – 2003. – Вып. 2. – С. 158–160.
2. Камелина О.Н., Проскурина О.Б., Жинкина Н.А. Способ окраски препаратов эмбриологических структур растений / АС № 1631424 СССР, кл. G 01 33/18. 25.10.1988.
3. Камелина О.Н., Проскурина О.Б., Жинкина Н.А. К методике окраски эмбриологических препаратов // Бот. журн. 1992. – Т. 77. – № 4. – С. 93–96.
4. Тырнов B.C., Еналеева Н.Х. Автономное развитие зародыша и эндосперма у кукурузы // Докл. АН СССР. – 1983. № 3. – С.722–725.
5. Alatortseva T.A., Tyrnov V.S. Reproducing of haploid and diploid maize forms in vitro // Maize Genet. Coop News. Lett., 2001, 75: 56.
6. Ao G.M., Zhao S.X., Li G.H. Induction of haploid plantlets from unpollinated maized ovaries in ovaries in vitro // Acta Genetica Sinica, 1982, Vol. 9, No. 4, P. 281–283.
7. Dore C. Obtention de plantes haploides de chou cabus (Brassica oleracea L. ssp. capitata) apres culture in vitro d’ovules pollinises par du pollen irradie // C.R. Acad. Sci. Paris, Ser 3, 1989, Vol. 309, No. 19, P. 729–734.
8. Gibson M.S. Dihaploid plant production from ovules cultures of sugar beet// Proc. N. D. Acad. Sei., 1987, P. 41–44.
9. He C.P., Yang H.Y. Picloram as an exogenous hormone promotes embryoid differentiation in rice ovary culture // Acta Biol Exp Sin, 1987, Vol. 20, No. 3, P. 283–291.
10. Huang G., Gu M., He S. Observation of induced maize (Zea mays) parthenocarpy by culture of ears in vitro // Apomixis Newsletter, 1991, No. 30, P.9.
11. Hosemans D., Bossoutrot D. Induction of Haploid Plants from in vitro Culture of Unpollinated Beet Ovules (Beta vulgaris L.) // Z. Pflanzenzucht, 1983, 91, No. 1, S. 74–77.
12. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures // Physiol. Plant., 1962, 15 (3): 473–497.
13. Raquin C. Induction of haploid plants by in vitro culture of Petunia ovaries pollinated with irradiated pollen // Z. Pflanzenzucht. 1985, Vol. 94, No. 2, P. 166–169.
14. Sauton A. Doubled haploid production in melon (Cucumis melo L.) // Cucurbitaceae’88: proc. EUCARPIA Meet. Cucurbit Genet. and Breed., Avignon-Montfavet, May 31 – June 1–2. Paris, 1988, P. 119–128.
15. Tang F., Tao Y., Zhao T. Y., Wang G. In vitro production of haploid and doubled haploid plants from pollinated ovaries of maize (Zea mays) // Plant Cell. Tissue and Organ Culture, 2006,Vol. 84, Issue 2, P. 233–237.
16. Truong-Andre I, Demarly Y. Obtaining plants by in vitro culture of unfertilized maize ovaries ( Zea mays L.) and preliminary studies on the progeny of a gynogenetic plant // Z Pflanzenzucht, 1984, 92, P. 309–320.
17. Truong-Andre I. In vitro haploid plants derived from pollination by irradiated pollen on cucumber // Cucurbitaceae’SB: proc. EUCARPIA Meet. Cucurbit Genet, and Breed., Avignon-Montfavet, May 31 – June 1–2. Paris, 1988, P. 143–144.
18. Uchimiya H., Kameya T., Takanashi N. In vitro culture of unfertilized ovules in Solanum melongena and Zea mays // Jpn. J. Breeding, 1971, Vol. 21, P. 247–250.
19. Zhang S., Zhang Z., Liu Z., Shen Y., Si Z. Индукция гаплоидов из неопылённых семяпочек мужскистерильной линии пшеницы. Yichuan = Hereditas (China), 1993, Vol. 15, No. 1, P. 20–21.
20. Zhu Z.C., Wu H.S. In vitro production of haploid plantlets from the unpollinated ovaries of Triticum aestivum and Nicotiana tabacum // Acta Genet. Sin., 1979, Vol. 6, No. 2, P. 181–183.

Загрузки

Опубликован

2017-12-25

Выпуск

Раздел

Естественные науки